Diagnóstico de tuberculosis pulmonar en lavado broncoalveolar: desempeño de la PCR en comparación con las pruebas microbiológicas de rutina

  • Olga L. Rincón-Caballero Hospital Pablo Tobón Uribe
  • María A. Cano-Romero Hospital Pablo Tobón Uribe
  • Beatriz H. Aristizábal-Bernal Hospital Pablo Tobón Uribe
Palabras clave: mycobacterium tuberculosis, lavado broncoalveolar, reacción en cadena de la polimerasa, medios de cultivo.

Resumen

Introducción: en pacientes con alta sospecha clínica, alteraciones radiológicas y síntomas respiratorios compatibles con tuberculosis pulmonar se recomienda obtener muestras de lavado broncoalveolar para mejorar la sensibilidad diagnóstica de la prueba utilizada. Objetivo: describir el desempeño de la reacción en cadena de la polimerasa (PCR) para la detección de Mycobacterium tuberculosis en muestras de lavado broncoalveolar, en casos sospechosos de tuberculosis pulmonar. Materiales y métodos: se realizó un estudio retrospectivo analítico de 611 muestras de lavado broncoalveolar, provenientes de 606 pacientes con sospecha de tuberculosis pulmonar, que asistieron al Hospital Pablo Tobón Uribe (Colombia) entre 2005 y 2015. La sensibilidad, especificidad y valores predictivos negativos y positivos de la reacción en cadena de la polimerasa se calcularon mediante comparación frente al cultivo (estándar de referencia). Resultados: del total de muestras analizadas el 4,9% fueron positivas para Mycobacterium tuberculosis por reacción en cadena de la polimerasa, y el 3,9% por cultivo. De las muestras positivas por reacción en cadena de la polimerasa el 80% (24/30) fueron positivas al cultivo. La sensibilidad, especificidad y valores predictivos negativos y positivos de la reacción en cadena de la polimerasa para Mycobacterium tuberculosis en muestras de lavado broncoalveolar fue de 100%, 99,0%, 100% y 80,0%, respectivamente. Conclusión: la reacción en cadena de la polimerasa para la detección de Mycobacterium tuberculosis en lavados broncoalveolares es superior en tiempo, sensibilidad y especificidad que el extendido y el cultivo, por lo que, junto con los datos clínicos del paciente, es efectiva para hacer un rápido abordaje diagnóstico.

Descargas

La descarga de datos todavía no está disponible.

Biografía del autor/a

Olga L. Rincón-Caballero, Hospital Pablo Tobón Uribe

Bacterióloga y laboratorista clínica, MSc en Microbiología. Bacterióloga, Hospital Pablo Tobón Uribe. Medellín, Colombia.

María A. Cano-Romero, Hospital Pablo Tobón Uribe

Bacterióloga y laboratorista clínica, MSc en Biotecnología. Bacterióloga, Laboratorio de Biología Molecular, Hospital Pablo Tobón Uribe. Medellín, Colombia.

Beatriz H. Aristizábal-Bernal, Hospital Pablo Tobón Uribe

Bacterióloga y laboratorista clínica, MSc en Microbiología, PhD en Ciencias Básicas Biomédicas. Coordinadora Laboratorio de Biología Molecular, Hospital Pablo Tobón Uribe. Medellín, Colombia.

Referencias bibliográficas

World Health Organization. Guidelines on the management of latent tuberculosis infection. Ginebra, Suiza: WHO Press; 2015.

Organización Mundial de la Salud. Tuberculosis. Nota descriptiva. 2017. Disponible: http://www.who.int/mediacentre/factsheets/fs104/es/. Consultado: oct 2017.

República de Colombia, Ministerio de la Protección Social, Instituto Nacional de Salud, Organización Panamericana de la Salud. Plan Estratégico: Colombia Libre de Tuberculosis 2010-2015. Para la Expansión y Fortalecimiento de la Estrategia Alto a la TB. 2009. Disponible: http://www.paho.org/col/index.php?option=com_docman&view=download&category_slug=publicaciones-ops-oms-colombia&alias=327-plan-estrategico-colombia-libre-de-tuberculosis-2010-2015&Itemid=688. Consultado: oct 2017.

Organización Mundial de la Salud. Informe mundial sobre la tuberculosis 2016. 2016. Disponible: http://www.who.int/tb/publications/global_report/gtbr2016_executive_summary_es.pdf?ua=1. Consultado: oct 2017.

Tripathy S, Kumar R, Singh SD. Prevalence of multidrug resistant pulmonary tuberculosis in North Bihar. J Clin Diagn Res 2015; 9: LC09-LC12.

https://doi.org/10.7860/JCDR/2015/14024.6793

Theegarten D, Totsch M, Worm K, Darwiche K, Anhenn O, Wohlschlager J. [Diagnosis of pulmonary tuberculosis using Ziehl-Neelsen stain and polymerase chain reaction]. Pathologe 2013; 34: 305-309.

https://doi.org/10.1007/s00292-013-1759-0

Selman B C, Poggi M H, Román JC, García C P, Lagos L M. Análisis retrospectivo del rendimiento de Amplicor-PCR® para la detección de Mycobacterium tuberculosis en muestras respiratorias y no respiratorias con baciloscopia negativa. Rev Chil Infecto 2009; 26: 495-498.

https://doi.org/10.4067/S0716-10182009000700001

Gholoobi A, Masoudi-Kazemabad A, Meshkat M, Meshkat Z. Comparison of Culture and PCR Methods for Diagnosis of Mycobacterium tuberculosis in Different Clinical Specimens. Jundishapur J Microbiol 2014; 7: e8939.

https://doi.org/10.5812/jjm.8939

Bajrami R, Mulliqi G, Kurti A, Lila G, Raka L. Comparison of GeneXpert MTB/RIF and conventional methods for the diagnosis of tuberculosis in Kosovo. J Infect Dev Ctries 2016; 10: 418-422.

https://doi.org/10.3855/jidc.7569

Chida N, Shah M. Infectious Diseases (ID) Learning Unit: How Rapidly to Evaluate for Active Tuberculosis Disease in Low-Prevalence Settings. Open Forum Infect Dis 2016; 3: 1-4.

https://doi.org/10.1093/ofid/ofw058

Le Palud P, Cattoir V, Malbruny B, Magnier R, Campbell K, Oulkhouir Y, et al. Retrospective observational study of diagnostic accuracy of the Xpert® MTB/RIF assay on fiberoptic bronchoscopy sampling for early diagnosis of smear-negative or sputum-scarce patients with suspected tuberculosis. BMC Pulm Med 2014; 14: 137-137.

https://doi.org/10.1186/1471-2466-14-137

Peña C, Césped M, Wolff M, Álvarez F, Garay C, Medina M, et al. Diagnóstico bacteriológico de tuberculosis pulmonar mediante fibrobroncoscopía en pacientes con VIH. Rev Chil Enf Respir 2014; 30 46-53.

https://doi.org/10.4067/S0717-73482014000100008

Baro A, Shah I, Chandane P, Khosla I. Pulmonary alveolar proteinosis in a 10-year-old girl masquerading as tuberculosis. Oxf Med Case Reports 2015; 2015: 300-302.

https://doi.org/10.1093/omcr/omv039

Martins Soares V, Da Silva Carvalho W, Spindola De Miranda S. Utilization of bacteriological culture for increased diagnostic performance at a tuberculosis reference center hospital. Rev Argent Microbiol 2012; 44: 173-176.

Gobierno de Chile, Ministerio de Salud, Instituto de Salud Pública. Manual Bacteriología TBC: Diagnóstico de tuberculosis. 2010. Disponible: http://www.ispch.cl/sites/default/files/documento/2010/05/Manual%20bacteriolog%C3%ADa%20TBC.pdf. Consultado: oct 2017.

Steingart KR, Schiller I, Horne DJ, Pai M, Boehme CC, Dendukuri N. Xpert® Mtb/Rif assay for pulmonary tuberculosis and rifampicin resistance in adults. Cochrane Database Syst Rev 2014: 1-166.

https://doi.org/10.1002/14651858.CD009593.pub3

Park JS. Issues Related to the Updated 2014 Korean Guidelines for Tuberculosis. Tuberc Respir Dis 2016; 79: 1-4.

https://doi.org/10.4046/trd.2016.79.1.1

Ortiz-Marín DC, Aristizábal BH. Métodos diagnósticos moleculares en tuberculosis. Medicina UPB 2013; 32 144-150.

D'Alessandro A, de Waard JH. Evaluación de dos pruebas comerciales para el serodiagnóstico de la tuberculosis pulmonar. Rev Chil Infectol 2008; 25: 37-40.

https://doi.org/10.4067/S0716-10182008000100008

Osman AL, Saeed NS, Elhassan MM. Polymerase Chain Reaction targeting insertion sequence IS6110 for the diagnosis of pulmonary tuberculosis among Sudanese children and young adults. Int J Mycobacteriol 2014; 3: 252-258.

https://doi.org/10.1016/j.ijmyco.2014.09.014

Raveendran R, Wattal C. Utility of multiplex real-time PCR in the diagnosis of extrapulmonary tuberculosis. Braz J Infect Dis 2016; 20: 235-241.

https://doi.org/10.1016/j.bjid.2016.01.006

Olsen SR, Long R, Tyrrell G, Kunimoto D. Induced sputum for the diagnosis of pulmonary tuberculosis: Is it useful in clinical practice? Can Respir J 2010; 17: e81-84.

https://doi.org/10.1155/2010/426185

Mohan A, Sharma SK. Fibreoptic bronchoscopy in the diagnosis of sputum smear-negative pulmonary tuberculosis: current status. Indian J Chest Dis Allied Sci 2008; 50: 67-78.

Centers for Disease Control and Prevention. Updated Guidelines for the Use of Nucleic Acid Amplification Tests in the Diagnosis of Tuberculosis. MMWR 2009; 58 7-10.

Nava-Paz O, Hassanhi M, Prieto L. Evaluación de la baciloscopia, cultivo y reacción en cadena de la polimerasa para el diagnóstico de tuberculosis pulmonar. Kasmera 2005; 33: 119-131.

Moore DF, Guzman JA, Mikhail LT. Reduction in turnaround time for laboratory diagnosis of pulmonary tuberculosis by routine use of a nucleic acid amplification test. Diagn Microbiol Infect Dis 2005; 52: 247-254.

https://doi.org/10.1016/j.diagmicrobio.2005.02.014

Dinnes J, Deeks J, Kunst H, Gibson A, Cummins E, Waugh N, et al. A systematic review of rapid diagnostic tests for the detection of tuberculosis infection. Health Technol Assess 2007; 11: 1-196.

https://doi.org/10.3310/hta11030

Chagas M, Maurici R, Bazzo ML, dos Santos JI. The use of polymerase chain reaction for early diagnosis of tuberculosis in Mycobacterium tuberculosis culture. Braz J Med Biol Res 2010; 43: 543-548.

https://doi.org/10.1590/S0100-879X2010007500031

Manosuthi W, Wiboonchutikul S, Sungkanuparph S. Integrated therapy for HIV and tuberculosis. AIDS Res Ther 2016; 13: 22.

https://doi.org/10.1186/s12981-016-0106-y

Chihota VN, Grant AD, Fielding K, Ndibongo B, van Zyl A, Muirhead D, et al. Liquid vs. solid culture for tuberculosis: performance and cost in a resource-constrained setting. Int J Tuberc Lung Dis 2010; 14: 1024-1031.

Schumacher SG, Sohn H, Qin ZZ, Gore G, Davis JL, Denkinger CM, et al. Impact of Molecular Diagnostics for Tuberculosis on Patient-Important Outcomes: A Systematic Review of Study Methodologies. PLoS One 2016; 11: e0151073.

https://doi.org/10.1371/journal.pone.0151073

Ryu YJ. Diagnosis of pulmonary tuberculosis: recent advances and diagnostic algorithms. Tuberc Respir Dis (Seoul) 2015; 78: 64-71.

https://doi.org/10.4046/trd.2015.78.2.64

Cheng VC, Yew WW, Yuen KY. Molecular diagnostics in tuberculosis. Eur J Clin Microbiol Infect Dis 2005; 24: 711-720.

https://doi.org/10.1007/s10096-005-0039-1

Campos M, Quartin A, Mendes E, Abreu A, Gurevich S, Echarte L, et al. Feasibility of shortening respiratory isolation with a single sputum nucleic acid amplification test. Am J Respir Crit Care Med 2008; 178: 300-305.

https://doi.org/10.1164/rccm.200803-381OC

Conaty SJ, Claxton AP, Enoch DA, Hayward AC, Lipman MC, Gillespie SH. The interpretation of nucleic acid amplification tests for tuberculosis: do rapid tests change treatment decisions? J Infect 2005; 50: 187-192.

https://doi.org/10.1016/j.jinf.2004.03.010

Chaisson LH, Roemer M, Cantu D, Haller B, Millman AJ, Cattamanchi A, et al. Impact of GeneXpert MTB/RIF assay on triage of respiratory isolation rooms for inpatients with presumed tuberculosis: a hypothetical trial. Clin Infect Dis 2014; 59: 1353-1360.

https://doi.org/10.1093/cid/ciu620

Lyra JM, Maruza M, Verza M, Carneiro MM, Albuquerque Mde F, Rossetti ML, et al. Evaluation of four molecular methods for the diagnosis of tuberculosis in pulmonary and blood samples from immunocompromised patients. Mem Inst Oswaldo Cruz 2014; 109: 805-813.

https://doi.org/10.1590/0074-0276130542

Lee SH, Kim SW, Lee S, Kim E, Kim DJ, Park S, et al. Rapid detection of Mycobacterium tuberculosis using a novel ultrafast chip-type real-time polymerase chain reaction system. Chest 2014; 146: 1319-1326.

https://doi.org/10.1378/chest.14-0626

Agudelo CA, Builes LN, Hernández M, Robledo J. Nuevos métodos para el diagnóstico de la tuberculosis. Iatreia 2008; 21: 321-332.

Theron G, Peter J, Calligaro G, Meldau R, Hanrahan C, Khalfey H, et al. Determinants of PCR performance (Xpert MTB/RIF), including bacterial load and inhibition, for TB diagnosis using specimens from different body compartments. Sci Rep 2014; 4: 5658.

https://doi.org/10.1038/srep05658

Kulkarni S, Singh P, Memon A, Nataraj G, Kanade S, Kelkar R, et al. An in-house multiplex PCR test for the detection of Mycobacterium tuberculosis, its validation & comparison with a single target TB-PCR kit. Indian J Med Res 2012; 135: 788-794.

Schluger NW. Changing approaches to the diagnosis of tuberculosis. Am J Respir Crit Care Med 2001; 164: 2020-2024.

https://doi.org/10.1164/ajrccm.164.11.2008100

Nikbakhsh N, Bayani M, Siadati S. The Value of Bronchoalveolar Lavage in the Diagnosis of Sputum Smear-NegativePulmonary Tuberculosis. Iran J Pathol 2015; 10: 35-40.

Cómo citar
1.
Rincón-Caballero OL, Cano-Romero MA, Aristizábal-Bernal BH. Diagnóstico de tuberculosis pulmonar en lavado broncoalveolar: desempeño de la PCR en comparación con las pruebas microbiológicas de rutina. Med. Lab. [Internet]. 1 de septiembre de 2017 [citado 22 de abril de 2021];23(9-10):475-84. Disponible en: https://medicinaylaboratorio.com/index.php/myl/article/view/26
Publicado
2017-09-01
Sección
Artículos originales
Crossref Cited-by logo